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      當(dāng)前位置:首頁(yè)技術(shù)文章免疫組化實(shí)驗(yàn)常見問題有哪些?

      免疫組化實(shí)驗(yàn)常見問題有哪些?

      更新時(shí)間:2023-10-19點(diǎn)擊次數(shù):1277

      免疫組織化學(xué)(immunohistochemistryIHC)是一種綜合定性、定位和定量;形態(tài)、機(jī)能和代謝密切結(jié)合為一體的研究和檢測(cè)技術(shù)。在原位檢測(cè)出病原的同時(shí),還能觀察到組織病變與該病原的關(guān)系,確認(rèn)受染細(xì)胞類型,從而有助于了解疾病的發(fā)病機(jī)理和病理過(guò)程。那么你知道免疫組化實(shí)驗(yàn)常見問題有哪些嗎?讓我們一起來(lái)看看吧!

      一、石蠟切片再染色過(guò)程出現(xiàn)脫片現(xiàn)象

      1. 烤片時(shí)間不夠,或溫度不夠,可以延長(zhǎng)烤片時(shí)間和提高烤片溫度;

      2. 用含有多聚賴氨酸的玻片,可以購(gòu)買到或這自己做;

      3. 有些組織本身就容易掉片,如骨組織等,操作時(shí)沖PBS不要直接沖到組織上,沖到組織上方,讓它流下沖洗組織;

      4. 用高溫修復(fù)時(shí),溫度驟冷也可能引起。

      二、邊緣效應(yīng)

      1. 組織邊緣與玻片粘貼不牢,邊緣組織松脫漂浮在液體中,每次清洗不易將組織下面試劑洗盡所致. 解決辦法:制備優(yōu)質(zhì)的膠片(APES或多聚賴氨酸),切出盡量薄的組織切片,不厚于4微米,組織的前期處理應(yīng)規(guī)范,盡量避免選用壞死較多的組織;

      2. 切片上滴加的試劑未充分覆蓋組織,邊緣的試劑容易首先變干,濃度較中心組織高而致染色深。解決辦法:試劑要充分覆蓋組織,應(yīng)超出組織邊緣2mm。用組化筆畫圈時(shí),為了避免油劑的影響,畫圈應(yīng)距組織邊緣3-4mm

      三、產(chǎn)生組織切片非特異性染色

      1. 抗體孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)、抗體濃度高易增加背景著色。這可通過(guò)縮短一抗/二抗孵育時(shí)間、稀釋抗體來(lái)控制。這是最重要的一條;

      2. 一抗用多克隆抗體易出現(xiàn)非特異性著色,建議試用單克隆抗體看看;

      3. 內(nèi)源性過(guò)氧化物酶和生物素在肝臟、腎臟等組織含量很高(含血細(xì)胞多的組織),需要通過(guò)延長(zhǎng)滅活時(shí)間和增加滅活劑濃度來(lái)降低背景染色;

      4. 非特異性組分與抗體結(jié)合,這需要通過(guò)延長(zhǎng)二抗來(lái)源的動(dòng)物免疫血清封閉時(shí)間和適當(dāng)增加濃度來(lái)加強(qiáng)封閉效果;

      5. DAB孵育時(shí)間過(guò)長(zhǎng)或濃度過(guò)高;

      6. PBS沖洗不充分,殘留抗體結(jié)果增強(qiáng)著色,在一抗、二抗或SP孵育之后的浸洗尤為重要;

      7. 標(biāo)本染色過(guò)程中經(jīng)常出現(xiàn)干片,這容易增強(qiáng)非特異性著色。

      四、免疫組化染色呈陰性結(jié)果

      1. 抗體濃度和質(zhì)量問題以及抗體來(lái)源選擇錯(cuò)誤;

      2. 抗原修復(fù)不全,對(duì)于甲醛固定的組織必須用充分抗原修復(fù)來(lái)打開抗原表位,以利于與抗體結(jié)合;

      3. 組織切片本身這種抗原含量低;

      4. 血清封閉時(shí)間過(guò)長(zhǎng);

      5. DAB孵育時(shí)間過(guò)短;

      6. 細(xì)胞通透不全,抗體未能充分進(jìn)入胞內(nèi)參與反應(yīng);

      7. 開始做免疫組化,我建議你一定要首先做個(gè)陽(yáng)性對(duì)照片,排除抗體等外的方法問題。

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