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      當(dāng)前位置:首頁技術(shù)文章milipore超濾管的正確使用問題

      milipore超濾管的正確使用問題

      更新時間:2025-12-16點擊次數(shù):325

      一、蛋白在濃縮時出現(xiàn)了沉淀,如何改進(jìn)?

      蛋白如果濃縮過快或者過度濃縮都有可能引起蛋白沉淀。建議蛋白濃縮后的最終濃度不超過20mg/ml。對于對濃縮速度敏感而容易沉淀的蛋白,建議的改進(jìn)方法是:

      1)離心力降為推薦離心力的30%-50%

      2)改用截留分子量更大的超濾管(如原本選用10k,此時可以選擇30k 

      3)在濃縮過程中取出超濾管,用槍頭反復(fù)吹吸幾次后再繼續(xù)濃縮

      4)體積較大的樣品可考慮選用攪拌式超濾杯,減少沉淀的發(fā)生。

      二、Amicon® Ultra超濾管可以用酒精消毒滅菌么?

      Amicon® Ultra70%乙醇是兼容的,但是對滅菌處理的具體方法沒有做相關(guān)的測試,所以無法提供更進(jìn)一步的參考信息。建議采用Ultrafree無菌離心管對濃縮后的樣品進(jìn)行過濾除菌。

      三、Amicon® Ultra超濾裝置是否可以用于高壓滅菌?

      Amicon® Ultra都是采用熱封設(shè)計,不可以用高壓高溫滅菌。

      四、懷疑濃縮過程中目的蛋白和超濾膜之間可能存在非特異性吸附,如何改善? 

      Amicon® Ultra超濾管使用的是再生纖維素膜,這種材質(zhì)是蛋白吸附zui低的超濾膜。但是對于一些疏水性蛋白或非極性蛋白,它們和膜的非特異吸附可能會增強(qiáng)。對于這種情況,可以嘗試在實驗前對超濾管進(jìn)行封閉處理,也可以嘗試換成Amicon® Ultra 0.52來進(jìn)行實驗,通過減小膜面積來降低非特異性吸附。

      五、有時候用超濾離心管連水都離不下來,可能是什么原因?

      Amicon® Ultra超濾膜中含有微量甘油。如果出現(xiàn)這種情況,請先用0.1 N NaOH清洗再離心。最后用緩沖液或Milli-Q®水再次清洗后甩干。清洗后的濾膜應(yīng)立即使用,如暫時不用,請保持潤濕狀態(tài),避免重新干燥。

      六、如果要用超濾的方法分離兩種蛋白,那么這兩個蛋白的大小需要相差多少?

      按照經(jīng)驗,建議兩個蛋白的分子量要相差一個數(shù)量級(10倍)。

      七、說明書中推薦在室溫下進(jìn)行離心,考慮到蛋白的穩(wěn)定性,是否可以在4℃進(jìn)行離心?

      可以,但是低溫會增加蛋白樣品的粘性,導(dǎo)致流速減慢,建議可將離心時間延長到原來的1.5倍。

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      八、濃縮后發(fā)現(xiàn)濃縮液中沒有目的蛋白,可能的原因有哪些?

      首先,Amicon® Ultra超濾管的蛋白zui低起始濃度為25ug/ml。請確保樣本的起始濃度大于這個濃度。其次,如果問題仍然出現(xiàn),請不要丟棄樣本濾過液以便用于分析可能的原因:

      1)如果目的樣本在濾過液中,那么請排查:

        a) 是否選擇了合適截留分子量的超濾管(目的蛋白分子量的1/2或者1/3)?

        b)使用的離心力是否是在限定范圍內(nèi)?如果使用的是rpm,請換算成相應(yīng)的g離心力,具體換算方法請垂詢。

        c)離心機(jī)最近是否有校準(zhǔn)過?

        d)是否shou次嘗試這個蛋白?如果能確保用同樣的超濾管對其它蛋白成功操作的話,那么有可能是這個目的蛋白的原因。有時蛋白會因其本身的一些特性(構(gòu)象差異)而影響濃縮效果,建議選用更小截留分子量的超濾管(如原本選用30k,此時可以選擇10k

      2)如果目的樣本也不在濾過液中,那么:

        a)蛋白樣本起始濃度是否大于25ug/mL

        b)用來確定樣本濃度的方法是什么?是否可信?

        c)目的蛋白是不是沉淀了?如果是,具體解決方法請參考上面的關(guān)于蛋白沉淀問題的解釋。

      九、產(chǎn)品訂購信息:

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