BrainBits培養基好不好？

2024-10-25 BrainBits培養基是一種無血清培養基，由Neurobasal、B27和Glutamax預混合而成，適用于神經元的生長和培養。?BrainBits培養基（NbActiv1）由Neurobasal、B27和Glutamax預混合而成，這些成分的組合優化了神經元的生長條件。它特別適用于4天后的神經元存活，并且簡化了實驗操作，減少了污染的風險?。一、BrainBits培養基優點?無血清培養?：BrainBits培養基是一種無血清培養基，避免了血清批次間差異對實驗結果的影響，提高...

全蛋白的提取方法和注意事項

2024-10-25 一、全蛋白的提取方法主要包括以下幾種?。全蛋白的提取方法一：?細胞準備和清洗?：首先，準備近乎長滿的細胞，例如10cm大皿中的細胞。使用預冷的PBS清洗細胞1-2次，并棄去PBS。全蛋白的提取方法二：?細胞裂解?：加入適量的裂解液，如RIPA裂解液（強），并加入PMSF以抑制蛋白酶活性。如果需要提取磷酸化蛋白，還需加入磷酸酶抑制劑。裂解液配好后，將細胞在4℃下裂解15分鐘。全蛋白的提取方法三：超聲破碎?：將裂解后的細胞用超聲波破碎儀處理1-2分鐘，功率保持在20-30%，保持...

怎么提高PCR擴增效率？

2024-10-24 在PCR實驗過程中，提高PCR擴增效率是實驗成功的關鍵，下面我們探究一下如何提高PCR擴增效率~1.引物的設計引物的設計是PCR擴增效率的關鍵。引物長度應在18-30堿基之間，通常為20nt。引物序列應具有dute性，避免在非目的片段中存在。引物的GC含量應在40-60%之間，避免過多的G+C導致非特異條帶?。2.?優化反應條件??增加循環數?：通過增加循環次數可以提高擴增效率。?提純模板?：確保模板DNA的純度，去除雜質和抑制劑。?使用高質量的Taq酶?：選擇活性高、穩定性...

大小鼠采血具體操作

2024-10-24 1、尾尖采血這是常用且操作簡便的方法之一。首先將小鼠固定并暴露其尾巴，通常將其浸泡在40-50℃的溫水中幾分鐘或用酒精棉球擦拭鼠尾，使血管充盈。然后用無菌手術刀快速剪去尾尖1-2mm，血液會自然流出。2、摘眼球采血用左手拇指、食指和中指抓取小鼠的頸部頭皮，小指和無名指固定尾巴。輕壓需要摘取的眼部皮膚，使眼球充血突出。用眼科剪剪去小鼠的胡須，防止血從胡須處留下引起溶血。用眼科彎鑷夾取眼球并快速摘取，并使血液從眼眶內流入0.5mlEP管中。3、眼眶靜脈叢采血：此方法適用于多次重復...

常見實驗動物抓拿固定手法

2024-10-23 （一）小白鼠(mouse)習慣用右手的同學，建議使用右手抓住小鼠尾部，將其提起并放在鼠籠鐵紗網上或粗糙物上。在小鼠向前掙脫時，用左手的拇指和食指抓住其頸部皮膚，并以左手的小指和掌部夾住其尾部。空出的右手進行后續實驗，習慣用左手的同學則相反操作。（二）大白鼠(rat)習慣用右手的同學，建議戴上防護手套，用右手抓住大鼠尾巴中部提起，左手按住背部皮膚。可使用手術臺固定，將大鼠四肢放入手術臺松緊環內，收緊環扣以固定。空出的右手進行后續實驗，習慣用左手的同學則相反操作。（三）豚鼠(ca...

新生牛血清含有豐富的營養成分

2024-10-23 新生牛血清主要來源于剛出生的小牛。在小牛出生后的短時間內，通過無菌操作采集其血液，經過離心、分離等步驟，提取出血清部分。由于新生牛血清中含有大量的生長因子、細胞因子和其他生物活性物質，因此具有較高的營養價值和生物活性。新生牛血清的制備方法：1.采血：在無菌條件下，從小牛頸靜脈或心臟穿刺采血，避免污染。2.離心：將采集到的血液放入離心管中，進行高速離心，使血細胞與血清分層。3.分離：用無菌吸管將上層血清吸出，避免吸取到下層的血細胞。4.過濾：將分離出的血清通過0.22微米的濾膜...

原核生物基因表達的特點及調控機制

2024-10-22 一、原核生物基因表達的特點1.只有一種?RNA聚合酶?原核生物只有一種RNA聚合酶，負責所有基因的轉錄過程。2.?以?操縱子為基本單位?原核生物的基因表達以操縱子為單位，將功能相關的基因組織在一起，同時關閉或開啟基因表達，既經濟有效，又保證其生命活動的需要。?3.轉錄和翻譯偶聯進行?原核生物的轉錄和翻譯是偶聯進行的，mRNA合成后立即用于蛋白質合成，無需中間存儲。（如需mRNA合成試劑盒可以選擇CELLSCRIPTT7ARCA加帽mRNA合成試劑盒）?4.mRNA翻譯起始部位...

蛋白電泳條帶大小不合的原因

2024-10-21 蛋白電泳條帶大小不合怎么辦，本文為您解答一下。一、蛋白電泳條帶大小不合原因?1.凝膠配制問題?：凝膠配制過程中組分比例不合理、溫度、陽光、雜質等外界因素的影響可能導致丙烯酰胺聚合不wanquan，從而影響條帶的分離效果?。?2.電泳條件問題?：電泳時電壓過高、溫度過高、電泳速度過快等條件設置不當，可能導致條帶大小不合?。?3.樣品處理問題?：樣品未wanquan變性或含有未清除的雜質，也可能導致電泳條帶大小不合?。?二、蛋白電泳條帶大小不合解決方法??1.檢查凝膠配制?：確保...